在日常實驗過程中，如果培養箱反復出現污染，需結合“日常預防消毒"和“污染后清潔"兩步操作，核心是破壞微生物滋生環境，具體方法如下：

一、日常預防消毒（避免污染反復）

1. 定期清潔內部：每1-2周清空培養箱，用75%醫用酒精濕巾擦拭內壁、隔板、托盤（可拆卸部件可浸泡酒精5分鐘），重點清潔角落、門縫等易積塵處。

2.紫外線消毒：每次使用后或每日結束實驗時，開啟箱內紫外線燈（確保無樣品），照射30-60分鐘，消毒后通風10分鐘再放入樣品（紫外線會產生臭氧，需避免直接吸入）。

3. 濕度水盤管理：水盤需用無菌水或蒸餾水，每周更換1次，換水時用酒精擦拭水盤內壁，避免細菌在水中滋生。

4. 樣品規范放置：樣品瓶/皿需密封完好，避免直接敞口；不同類型樣品分開擺放，減少交叉污染風險。

二、污染后消毒（清除已有污染）

1. 清空并初步清潔：取出所有樣品（污染樣品需單獨滅菌處理），用酒精濕巾擦拭內部后，再用0.1%含氯消毒液（如84消毒液，按1:500稀釋）擦拭內壁，靜置20分鐘后用無菌水擦去殘留（避免腐蝕金屬部件）。

2. 高溫干熱滅菌：若培養箱支持“干熱滅菌模式"（一般最高溫度160-180℃），可設置160℃滅菌2小時（需取出不耐高溫部件，如橡膠密封條）；無此模式可改用“低溫甲醛熏蒸"（需專業操作，避免甲醛殘留）。

3. 部件單獨滅菌：隔板、托盤、水盤等可拆卸部件，可放入高壓蒸汽滅菌鍋（121℃、103kPa，20分鐘），殺滅芽孢等頑固微生物。

4. 恢復與監測：消毒后通風24小時，放入無菌培養基空白對照（37℃培養24-48小時），確認無雜菌生長后再正常使用。

關鍵注意事項

- 避免用高濃度酒精（如95%）或強酸強堿消毒劑，防止腐蝕培養箱內膽和傳感器。

- 若污染反復出現，需檢查培養箱門封條是否老化（密封不嚴會漏菌），或樣品本身是否帶菌（接種前需確認樣品無菌性）。